【产品概述】
抗HA标签纳米抗体琼脂糖珠用于免疫沉淀HA标签(YPYDVPDYA)的融合蛋白，由识别Myc标签的纳米抗体与琼脂糖珠共价结合组成。纳米抗体微珠用于免疫共沉淀实验，IP复合物无论采用非变性洗脱还是变性洗脱均不会出现抗体的轻、重链污染问题，而且亲和力强，结合量高，特异性强，兼容性好，稳定性好。适用于哺乳动物、植物、细菌、酵母、昆虫等各种生物的细胞提取物。
【微珠属性】
适用范围 IP、co-IP、ChIP、RIP、酶活测定、质谱分析
适用抗体种属 HA标签的融合蛋白
蛋白载量 20 μL微珠悬液结合2-5 μg HA tag的融合蛋白
亲和常数（KD） nM到pM
耐受高温 55℃
微珠储液 PBS (含20%乙醇)
配基 羊驼纳米抗体（抗体分子量仅14 kDa)
每反应推荐用量 20μL
【试剂准备】
|
缓冲液名称
|
成分
|
推荐使用圣尔产品
|
|
Lysis buffer
|
50 mM Tris-HCl pH7.5; 150 mM NaCl; 1% TritonX-100; 1 mM EDTA
|
IP&co-IP裂解、结合、清洗buffer
（圣尔#SB-IP011）
|
|
RIPA buffer
|
10 mM Tris-HCl pH7.5; 150 mM NaCl; 0.5 mM EDTA; 0.1% SDS; 1% Triton X-100; 1% Deoxycholate
|
细胞/组织裂解液RIPA（强）
（圣尔#SB-BR040）
|
|
Wash buffer
|
50 mM Tris-HCl pH7.5;150 mM NaCl;1 mM EDTA
|
IP&co-IP裂解、结合、清洗buffer
（圣尔#SB-IP011）
|
|
2×SDS loading buffer
|
120 mM Tris-HCl pH6.8; 20% glycerol; 4% SDS； 0.04% Bromophenol blue;10% β-mercaptoehanol
|
SDS-PAGE蛋白上样缓冲液(2X无气味)（圣尔#SB-PR039）
|
|
蛋白洗脱缓冲液（酸性）
|
0.2 M glycine pH 2.5
|
IP&co-IP酸性蛋白洗脱缓冲液
（圣尔#SB-IP012）
|
|
中和缓冲液
|
1 M Tris pH 10.4
|
IP&co-IP中和缓冲液
（圣尔#SB-IP013）
|
|
蛋白酶抑制剂
|
1 M PMSF
|
复合型蛋白酶抑制剂（100×)
（圣尔#SB-WB016）
|
注意：使用前在Lysis buffer、Wash buffer或IP&co-IP裂解、结合、清洗buffer（圣尔#SB-IP011）中添加适量的蛋白酶抑制剂。
【使用说明】
1 收集细胞：每个免疫沉淀反应大约使用106-107的哺乳动物细胞(约一个10厘米培养皿)表达HA-tag的融合蛋白。吸出生长培养基、向培养皿中加入2 mL预冷的PBS洗涤细胞2次，利用细胞刮或胰酶消化的方法收集贴壁细胞，细胞转移到离心管，500×g离心3 - 5分钟并丢弃上清液。
2 细胞裂解：用500 μL预冷的裂解缓冲液重悬细胞，在裂解缓冲液中加入蛋白酶抑制剂。对于膜蛋白或核/染色质蛋白，可使用RIPA裂解液中加入蛋白酶抑制剂。把离心管放置在冰上30分钟，可以每10分钟充分吹打一次。细胞裂解产物在4°C，20,000 ×g条件下离心15分钟，转移裂解产物到一个新的预冷管中，丢弃沉淀。注意：此时细胞裂解产物可以放在-80°C进行长期储存。
3 平衡珠子：振荡混匀抗HA标签纳米抗体琼脂糖珠，吸取20 μL到500 μL预冷的裂解缓冲液中，在4°C，2500×g离心3分钟，丢弃上清液。(此步骤可选)
4 结合蛋白：将细胞裂解产物加入到平衡的抗HA标签纳米抗体琼脂糖珠中，在4°C冷柜中的旋转混合仪上结合30-120 min，也可以根据需要延长结合时间。如果需要，保存50 μL的裂解产物进行免疫印迹分析。
5 在4°C，2500×g条件下离心3分钟，丢弃上清液。
6 清洗珠子：用500 μL预冷的裂解缓冲液中洗涤抗HA标签纳米抗体琼脂糖珠，在4°C，2500×g条件下离心3分钟，丢弃上清液并重复洗涤2次。(可选：在第二次洗涤的步骤中增加盐浓度到500 mM)。
7 洗脱蛋白：根据后续检测方案选择不同的洗脱方法
7.1 变性洗脱法（此方法洗脱的样品适用于PAGE、WB检测）
彻底吸去剩余的上清液,加入30-50 μL的2×SDS-PAGE loading buffer重悬沉淀物，稍微涡旋以混匀，随后稍稍微量离心让样品沉淀。将样品加热95°C，10 分钟。分离微珠，将上清液转移到新管。上清液为样品，用于后续SDS-PAGE、WB分析。
7.2 非变性洗脱法（此方法保持原有的生物活性，可用于功能分析、质谱分析，也适于抗体纯化）
分离微珠，弃上清，向微珠中加入50 μL蛋白洗脱缓冲液（酸性），在室温或低温不停吹打或震荡30-60秒。室温洗脱比4°C效率更高，建议酸性洗脱缓冲液在室温下预温。分离微珠，收集上清至新管，并立即加入5 μL的中和缓冲液，使洗脱产物pH调节至中性，样品用于后续分析。
7.3 多肽竞争洗脱法：（此方法为非变性洗脱法，洗脱后的样品保持原有的生物活性，可用于后期功能分析）
取适量HA多肽溶解于1×TBS中，配置成200 μg/mL HA洗脱液。向微珠中加入100 μL多肽洗脱液，混匀后置于侧摆摇床或旋转混合仪上，室温摇晃孵育30-60分钟，或4°C孵育4-6小时。孵育完成之后，分离微珠，将上清转移到新的离心管，上清即为洗脱的HA标签蛋白。
【注意事项】
1 严禁冻结。
2 密闭保存，避免干燥，保持微珠浸于储液。
3 本品为悬液，使用前需充分混匀，微珠彻底悬浮后吸取，使用过程中避免高速离心。
4 蛋白样品收集后宜尽快完成纯化工作，并应始终放置在4℃或冰浴，以减缓蛋白降解或变性。为有效抑制蛋白降解，强烈建议在蛋白样品、Lysis buffer、Wash buffer中都添加适量的蛋白酶抑制剂。细胞裂解物可置于-80°C下长期保存。
5 裂解核蛋白，可在PIPA（强）裂解液中加入1mg/mL DNaseI、2.5 mM MgCl2、蛋白酶抑制剂和1 mM PMSF。
6 在结合反应过程中，微珠可能会出现聚团或呈片状，属于正常现象。
7 质控取样点1：样本充分裂解后，取数十微升样本，记作Input，即为反应前样本；质控取样点2：样本免疫沉淀孵育结束后，取上清样本10-50 μL，记作supernatant，即为上清样本。
【常见问题】
问题1 目标条带较弱/没有
可能原因：样品降解，需添加蛋白酶抑制剂，所有操作保持4℃以下冰上操作并防止冻融；抗体浓度太低，需增加抗体浓度，必要时设立浓度梯度，摸索最佳浓度；抗体亲合力太低，选用适合于IP/co-IP的相应抗体。
问题2 背景太高
可能原因：在无血清培养液中裂解细胞；在免疫沉淀前增加微珠预洗、免疫沉淀后增加漂洗次数和严谨度（高盐或去垢剂，如在第二次洗涤的步骤中增加NaCl浓度到500 mM）；改用高严谨度裂解液；使用洁净的仪器或液体；不要接触WB的膜转移面。
问题3 杂带较多
可能原因：微珠的非特异性结合，或者样本上样量过高、或者抗体浓度过高。建议实验前对微珠增加漂洗，实验过程中增加洗涤次数，使用合适的样品和抗体浓度。
本产品仅供科研使用。
【储存条件及期限】
存放于4°C，微珠禁止冻结，有效期12个月；冰袋运输
